Page 225 - 《华中农业大学学报(自然科学版)》2022年第5期
P. 225

第 5 期                 姚炎 等:溜曲霉 M3b 产壳聚糖酶的固体发酵工艺优化及酶学性质                                    219

               色,由于营养消耗以及菌株代谢产物积累,测定的壳
               聚糖酶活力和蛋白含量开始下降。













                                                                 M:170 Marker;1:固体发酵粗酶液;2:硫酸铵沉淀;3:纯酶液;
                                                                4:壳聚糖酶酶谱。M :170 Marker;1:Solid fermentation crude en⁃
                                                                zyme solution;2:Ammonium sulfate precipitation;3:Purified AtChi⁃
                                                                to40;4:Enzymogram of chitosanase.
                   图4   培养时间对溜曲霉M3b产壳聚糖酶的影响
                                                                      图5   溜曲霉M3b菌株产壳聚糖酶纯化的
                  Fig. 4  Effect of fermentation time on chitosanase          SDS-PAGE电泳图谱
                       production by Aspergillus tamarii M3b
                                                                  Fig.5  SDS-PAGE electrophoresis of chitosanase
                   正交试验结果发现,发酵时间对于酶活力的影                               purified from Aspergillus tamarii M3b strain
               响最大,其次是发酵温度、起始pH。最优组合为发酵
                                                                Pd1(gi 953382223)壳聚糖酶对应的氨基酸残基肽段
               温度 32 ℃、起始 pH 7.0、发酵时间 6 d,此条件下进行
                                                                序列同源性为 100%。而肽段 EVTGEASWLMAR
               发酵,产酶活力达到20.56 U/mL,是初始固体发酵培
                                                                与 Aspergillus nidulans FGSC A4(gi 259480859)、As⁃
               养的221.3%。
                                                                pergillus fumigatus Af293(gi 146223521)以及 Micro⁃
               2.4  壳聚糖酶AtChito40的纯化
                                                                cystis aeruginosa(gi 754187083)来源的壳聚糖酶肽段
                   固体发酵培养基经缓冲液浸提的粗酶液,经硫
                                                                序列同源性为 100%。肽段 EVTGEASWLMAR 则
               酸铵沉淀、QSFF 阴离子交换层析纯化后得到电泳单
                                                                与 Penicillium oxalicum 114-2(gi 146323521)、Asper⁃
               一带。图 5 显示酶谱中仅出现 1 条暗带,说明该菌株
                                                                gillus nidulans FGSC A4(gi 259480859)和 Aspergil⁃
               产生的壳聚糖酶只有 1 种,对应蛋白的分子质量为
                                                                lus fumigatus Af293(gi 146323521)等来源的壳聚糖
               40 ku。通过 SDS-PAGE 电泳图和酶谱分析,发现该
                                                                酶氨基酸残基肽段序列同源性达 100%。结合以上
               壳聚糖酶达到电泳级纯度,并将蛋白命名为 AtChi⁃
                                                                的纯化过程和结果,可以证明该蛋白为壳聚糖酶。
               to40。
                   蛋白纯化结果(表 2)显示,该壳聚糖酶酶活回收                      值得注意的是,质谱显示的其他众多片段在数据库
               率为27.5%,纯化倍数为10.7倍。                              中 与 其 他 蛋 白 质 序 列 比 对 的 同 源 性 较 低 ,表 明
               2.5  壳聚糖酶AtChito40质谱鉴定                           AtChito40可能较为新颖。

                   在 NCBI 数据库中 3 个肽段分别都存在同源性                    2.6  pH 和温度对壳聚糖酶 AtChito40 活性和稳定
               为 100% 的壳聚糖酶肽段。肽段 MDVDCDG 与 As⁃                  性的影响
               pergillus nidulans FGSC A4(gi 259480859)、Asper⁃      菌株 M3b 产壳聚糖酶的最适温度结果见图 6A,
               gillus niger(gi 966763517)及 Penicillium digitatum  最适温度为 60 ℃,但该酶在 60 ℃保温 30 min,剩余酶

                                               表2   溜曲霉M3b壳聚糖酶的纯化结果
                                     Table 2  Purification of chitosanase from Aspergillus tamarii M3b

                        纯化步骤               总酶活/U         蛋白含量/mg        比酶活/(U/mg)       纯化倍数        回收率/%
                      Purification step   Total activity   Protein      Specific activity  Purification fold  Recovery
                粗酶液 Crude culture          1 868.60        988.01           1.89          1.00         100
                硫酸铵沉淀
                                           1 297.10        541.20           2.40          1.24        69.42
                Ammonium sulfate precipitation
                Q-SFF阴离子交换柱
                                            513.80          25.33          20.30          10.70       27.50
                Q-Sepharose fast flow
   220   221   222   223   224   225   226   227   228   229   230